产品货号:
KFS097
中文名称:
通用型Western试剂盒
英文名称:
产品规格:
10T|20T
发货周期:
1~3天
产品价格:
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蛋白印迹,也称Western,Western blot、Western blotting、Western印迹,简称WB,是用免疫学方法检测蛋白,研究。蛋白质的表达调控的重要方法之一。在蛋白质进行SDS-PAGE电泳后,利用百奥莱博Western Blotting检测试剂盒可以完成转膜,膜的封闭,一抗孵育,二抗孵育和ECL化学发光检测的工作。
组分 | 10T | 20T | 保存 | |
主要组分 | PVDF膜(5.5cm×7.0cm) | 10张 | 20张 | RT |
转移缓冲液(10×) | 1000mL | 1000mL×2 | 4℃ | |
Tween 20 | 1.5mL | 3.0mL | 4℃ | |
洗涤液(10×) | 400mL | 800mL | 4℃ | |
脱脂奶粉 | 10g | 20g | 4℃ | |
BSA | 6g | 12g | 4℃ | |
ECL化学发光试剂 | Stock A | 10mL | 20mL | 4℃ |
Stock B | 10mL | 20mL | 4℃ | |
二抗(三种供选择) | 羊抗小鼠IgG-HRP | 20μL | 40μL | -20℃ |
兔抗羊IgG-HRP | 20μL | 40μL | -20℃ | |
羊抗兔IgG-HRP | 20μL | 40μL | -20℃ |
保存:-20℃,有效期1年。
一抗,无水甲醇,去离子水,磷酸蛋白的检测需自备,磷酸蛋白的检测需自备BSA,X光片,显影液,定影液。
- 转膜缓冲液配制:100mL转移缓冲液(10×)+200mL无水甲醇+700mL去离子水。
- 洗涤液的配制:30mL洗涤液(10×)+270mL去离子水+150μL Tween 20。
- 封闭液的配制:20mL洗涤液+1.0g脱脂奶粉或20mL洗涤液+0.6g BSA。
按常规方法完成SDS-PAGE后,配制转膜缓冲液,然后把转膜缓冲液倒入小槽中备用。
- 转膜
- PVDF膜及滤纸的预处理:转膜前,裁剪与胶大小一致的PVDF膜泡入甲醇中,时间约为1min,小心取出膜放入蒸馏水中浸泡2min,然后把膜放置盛有转膜缓冲液的小槽中平衡15min,同时把已裁剪好的滤纸(与胶大小一致)和海绵也放入盛有转膜缓冲液的小槽中平衡15min。
- 转膜操作:
- 干式电转印
将转印槽阴极平放工作台上,并在上面加三张经转膜缓冲液平衡好的1mm厚的滤纸,将经转膜缓冲液平衡好的PVDF膜放在滤纸上,再将凝胶平放在PVDF膜上,最后在凝胶上加盖三层经转膜缓冲液平衡好1mm厚的滤纸,接通电源,15V进行恒压,转膜的时间根据蛋白分子量的大小而调整,分子量为40~100KD的蛋白转膜30~45min。 - 湿式电转印
打开电转夹,每侧垫上一块专用的转膜缓冲液平衡好的海面垫,再各放三块经转膜缓冲液平衡好的滤纸,滤纸与海面垫大小相同或与PVDF膜、凝胶大小相同均可,将凝胶平放在阴极侧滤纸上,最后将经转膜缓冲液平衡好PVDF膜平放在凝胶上,按照(-)夹板-海棉-滤纸-凝胶-PVDF膜-滤纸-海绵-夹板(+)装好,除尽气泡,夹好电转印夹。电泳槽(槽的一边放一块冰来降温)加满预冷的转膜缓冲液,插入电转印夹,连接好电极,接通电流,转印夹的PVDF膜应对电泳槽的正极,100v恒压进行转膜,转膜的时间根据蛋白分子量的大小而调整,分子量为40~100KD的蛋白转膜60min。
注:将夹子打开使黑的一面保持水平。在上面垫一张海绵垫,用玻棒来回擀几遍以擀走里面的气泡。(一手擀另一手要压住垫子使其不能随便移动。)在垫子上垫三层滤纸(可三张纸先叠在一起在垫于垫子上),一手固定滤纸一手用玻棒擀去其中的气泡。
要先将玻璃板撬掉才可剥胶,撬的时候动作要轻,要在两个边上轻轻的反复撬(可边撬边用流水缓缓冲洗)。撬一会儿玻璃板便开始松动,直到撬去玻板。(撬时一定要小心,胶很易裂,要用巧劲)除去小玻璃板后,将浓缩胶轻轻刮去(浓缩胶影响操作),要避免把分离胶刮破。小心剥下分离胶盖于滤纸上,用手调整使其与滤纸对齐,轻轻用玻棒擀去气泡。将膜盖于胶上,要盖满整个胶(膜盖下后不可再移动)并除气泡。在膜上盖3张滤纸并除去气泡。最后盖上另一个海绵垫,擀几下就可合起夹子。整个操作在转移液中进行,要不断的擀去气泡。膜两边的滤纸不能相互接触(接触后会发生短路)。转移液含甲醇,操作时要戴手套,实验室要开门以使空气流通。
- 干式电转印
- PVDF膜及滤纸的预处理:转膜前,裁剪与胶大小一致的PVDF膜泡入甲醇中,时间约为1min,小心取出膜放入蒸馏水中浸泡2min,然后把膜放置盛有转膜缓冲液的小槽中平衡15min,同时把已裁剪好的滤纸(与胶大小一致)和海绵也放入盛有转膜缓冲液的小槽中平衡15min。
- 膜的封闭
转膜完毕后,立即把蛋白膜放置到预先准备好的洗涤液中,漂洗1~2分钟,以洗去膜上的转膜液。从转膜完毕起,以后所有的步骤均要注意膜的保湿,避免膜的干燥,否则极易产生较高的背景。用巴斯特吸管吸尽洗涤液,加入封闭液,在摇床上缓慢摇动),室温封闭60分钟。如背景较高,可以在4℃封闭过夜。在整个Western过程中可使用侧摆摇床,侧向摆动速度比较缓慢,而且也容易让溶液覆盖膜。 - 一抗孵育
参考一抗的说明书,按比例用封闭液稀释一抗。可用10×10cm杂交袋进行一抗孵育,所需一抗孵育约为1.0mL,室温或4℃在侧摆摇床上缓慢摇动孵育一小时。如果效果不佳,可以在4℃缓慢摇动孵育过夜。取出膜,加入洗涤液,在侧摆摇床上缓慢摇动洗涤10分钟。吸尽洗涤液后,再加入洗涤液,漂洗3~5次,每次0分钟。如果结果背景较高可以适当延长漂洗时间并增加漂洗次数。 - 二抗孵育
根据一抗的类型,选择合适的二抗并参考二抗的说明书,按照适当比例用封闭液稀释辣根过氧化物酶(HRP)标记的二抗。可用10×10cm杂交袋进行二抗孵育,所需二抗孵育约为1.0mL,室温或4℃在侧摆摇床上缓慢摇动孵育一小时。加入洗涤液,在侧摆摇床上缓慢摇动洗涤10分钟。吸尽洗涤液后,再加入洗涤液,漂洗3~5次,每次10分钟。如果显色结果背景较高,可以适当延长洗涤时间并增加洗涤次数。 - ECL化学发光检测
- ECL工作液的配制
取适量的Stock A和Stock B等体积配成工作液,混合后即为ECL工作液(ECL工作液应现配现用)。将膜片平铺,滴加ECL工作液使其将膜片完全覆盖(每平方厘米膜片至少使用0.1mLECL工作液)。室温孵育2~3分钟。 - 蛋白信号显现
- 用平头镊钳住膜片,垂直置于吸水纸以吸去过量ECL工作液。
- 置膜片于二层保鲜膜之间,小心赶尽气泡。
- 将膜片吸附蛋白面朝上,置于X光片盒中。
- 于暗室中压上X光片。
- 曝光30秒,显影之。
- 根据实际荧光强度选择合适曝光时间。曝光完毕后,进行显影和定影,冲洗胶片。
- 用平头镊钳住膜片,垂直置于吸水纸以吸去过量ECL工作液。
- ECL工作液的配制
问题 | 可能原因 | 验证或解决办法 |
背景高 | 封闭不充分 | 延长封闭时间,更换合适的封闭剂(脱脂奶粉,BSA,血清等) |
一抗浓度过高 | 增加一抗稀释倍数, | |
抗体孵育温度过高 | 4℃孵育 | |
二抗非特异性结合或与封闭剂交叉反应 | 设置二抗对照(不加一抗),降低二抗浓度 | |
一抗或二抗与封闭剂有交叉反应 | 在孵育和洗涤液中加入Tween-20以减少交叉反应. | |
洗膜不充分 | 增加洗涤次数 | |
膜不合适 | NC膜比PVDF膜背景低 | |
膜干燥 | 保证充分的反应液,避免出现干膜现象 | |
没有阳性条带或很弱 | 一抗、二抗等不匹配 | 订购试剂时认真选取一抗与组织种属,一抗与二抗或/和底物与酶系统之间相匹配的抗体及底物。可通过设置内参可以验证二级检测系统的有效性。 |
一抗或/和二抗浓度低 | 增加抗体浓度,延长孵育时间 | |
封闭剂与一抗或二抗有交叉反应 | 封闭时使用温和的去污剂,如TWEEN20,或更换封闭剂(常用的脱脂奶、BSA、血清或明胶) | |
一抗不识别目的物种的靶蛋白 | 检查说明书,或做ClustalW比对,设阳性对照 | |
样本中无靶蛋白或靶蛋白含量过低(抗原无效) | 设置阳性对照,如果阳性对照有结果,但标本没有则可能是标本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低。后者可增加标本上样量至少每孔20~30μg蛋白,样本制备时使用蛋白酶抑制剂,或分级提取目的蛋白。 | |
转膜不充分,或洗膜过度 | 使用丽春红S检测转膜效果,PVDF膜需浸透,需正确的转膜操作,勿过度洗膜 | |
过度封闭 | 使用含0.5%脱脂奶或无脱脂奶的抗体稀释液,或更换封闭剂,减少封闭时间 | |
一抗失效 | 使用有效期内抗体,分装保存,避免反复冻融取用,工作液现配现用 | |
二抗受叠氮钠抑制 | 所用溶液和容器中避免含有叠氮钠(HRP的抑制剂) | |
酶和底物失效 | 直接将酶和底物进行混合,如果不显色则说明酶失活了。选择在有效期内、有活性的酶联物,使用新鲜的底物. | |
曝光时间过短 | 延长曝光时间 | |
多非特异性条带或条带位置不对 | 细胞传代次数过多,使其蛋白表达模式的分化 | 使用原始或传代少的细胞株,或平行实验 |
体内表达的蛋白样本具有多种修饰形式:乙酰化、磷酸化、甲基化、烷基化、糖基化等 | 查文献,使用去修饰的试剂使蛋白恢复其正确的大小 | |
蛋白样本降解 | 使用新鲜制备的标本,并使用蛋白酶抑制剂 | |
新蛋白或同族蛋白的分享同种表位的不同剪接方式 | 查其它文献报导,或BLAST搜寻,使用说明书报导的细胞株或组织 | |
一抗浓度过高 | 降低抗体浓度,可以减少非特异性条带 | |
二抗浓度过高产生非特异性结合 | 降低抗体浓度,增加二抗对照选择特异性更强,只针对重链的二抗 | |
抗体未纯化 | 使用单克隆或亲和纯化的抗体,减少非特异条带 | |
蛋白存在二聚体或多聚体 | SDS-PAGE电泳上样前,煮沸10min,以增强蛋白质解聚变性 | |
背景有白色/黑色斑点 | 转膜时有气泡或抗体分布不均 | 尽量去除气泡,抗体孵育时保持摇动 |
抗体与封闭剂结合 | 过滤封闭剂 | |
暗片现白条带 | 一抗或二抗加入过多 | 稀释抗体的浓度 |
目的条带过低/过高 | SDS-PAGE胶浓度选择不合适 | 调整胶浓度,分子量大的蛋白用低浓度胶,分子量小的蛋白用高浓度胶 |
“微笑”条带 | 迁移过快电泳温度过高 | 降低电泳速度,低温电泳(冷室) |
转膜不充分 | 膜没有完全均匀湿透 | 使用100% methanol浸透膜 |
靶蛋白分子量小于10,000 | 选择小孔径的膜,缩短转移时间 | |
靶蛋白等电点等于或接近转移缓冲液pH值 | 可尝试使用其他缓冲液如CAPS缓冲液(pH10.5)或使用低pH值缓冲液如乙酸缓冲液 | |
甲醇浓度过高 | 过高甲醇浓度会导致蛋白质与SDS分离,从而沉淀在凝胶中,同时会使凝胶收缩或变硬,从而抑制高分子量蛋白的转移。降低甲醇浓度或者使用乙醇或异丙醇代替。 | |
转移时间不够Thick gel | 对于厚的胶以及高分子量蛋白需要延长转移时间 |
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